Respuesta germinativa de Phaseolus vulgaris var. Velazco. en condiciones de estrés salino

Autores/as

  • Maryla Sosa del Castillo Universidad de Matanzas, Centro de Estudios Biotecnológicos, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Cuba.
  • Iris Mercedes Pintado Álvarez Universidad de Matanzas, Centro de Estudios Biotecnológicos, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Cuba.
  • Conrado Camacho Campos Universidad de Matanzas, Centro de Estudios Biotecnológicos, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Cuba.
  • Yordanys Martínez Dávalos Universidad de Matanzas, Centro de Estudios Biotecnológicos, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Cuba.
  • Daynet Sosa del Castillo Escuela Superior Politécnica del Litoral, SPOL, Centro de Investigaciones Biotecnológicas del Ecuador, Campus Gustavo Galindo Km. 30.5 Vía Perimetral, Guayaquil P.O. Box 09-01-5863, Ecuador.
  • Yunel Pérez Hernández Universidad de Matanzas, Centro de Estudios Biotecnológicos, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Cuba.

DOI:

https://doi.org/10.5281/zenodo.18404172

Palabras clave:

azúcares reductores, bioquímica, frijol, salinidad

Resumen

Contexto: La salinidad de los suelos constituye uno de los estreses abióticos más importantes que afecta el crecimiento y el desarrollo de los cultivos, en especial durante la etapa de germinación, donde la planta es más vulnerable.

Objetivo: El presente trabajo tuvo como objetivo evaluar la respuesta de Phaseolus vulgaris L. var. Velazco durante el proceso de germinación en condiciones de estrés salino.

Métodos: Las semillas se sembraron en placas Petri con diferentes soluciones de cloruro de sodio (0-200 mmol L-1) durante siete días. Se evaluaron los indicadores porcentaje de germinación, valor de germinación, longitud de la raíz e hipocótilo, número de raíces secundarias, peso fresco y seco de raíces e hipocótilo, el contenido de proteínas solubles totales y de azúcares reductores. Se utilizó un diseño completamente aleatorizado con cuatro réplicas por tratamiento.

Resultados: Las concentraciones elevadas de cloruro de sodio afectaron el porcentaje de germinación, el crecimiento de la raíz, del hipocótilo y la velocidad de germinación. La parte aérea mostró una mayor sensibilidad al estrés salino que la raíz con relación al peso fresco y seco. El contenido de azúcares reductores fue superior en los tratamientos 150, 175, 200 mmol L-1 de la sal con relación al control, mientras que los valores más elevados de proteínas solubles se obtuvieron en los tratamientos con 75 y 100 mmol L-1 de NaCl. Conclusiones: Los resultados obtenidos indican posibles mecanismos de osmoprotección en esta variedad para reducir el efecto negativo del estrés salino en el proceso de germinación y crecimiento temprano de las plántulas, y mantener el funcionamiento de los procesos metabólicos y la homeostasia celular.

Descargas

Los datos de descarga aún no están disponibles.

Referencias

Akhiyarova, G., Veselov, D., Ivanov, R., Sharipova, G., Ivanov, I., Dodd, I.C., & Kudoyarova, G. (2023). Root ABA accumulation delays lateral root emergence in osmotically stressed barley plants by decreasing root primordial IAA accumulation. Int. J. Plant Biol. 14, 77–90. https://doi.org/10.3390/ijpb14010007

Al-huraby, A.I., & Bafeel, S.O. (2022). The effect of salinity stress on the Phaseolus vulgaris L. plant. African Journal of Biological Sciences, 4(1), 94-107. https://doi.org/10.33472/AFJBS.4.1.2021.94-107

Anwar, A., & Kim, J.K. (2020). Transgenic breeding approaches for improving abiotic stress tolerance: recent progress and future perspectives. International Journal of Molecular Sciences, 21, 2695, 1-29. https://doi.org/10.3390/ijms21082695

Anwar, A., Zhang, S., He, L., & Gao, J. (2022). Understanding the physiological and molecular mechanism of salinity stress tolerance in plants. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 50(4), 12959. https://doi.org/10.15835/nbha50312959

Aslam, M.T., Khan, I., Chattha, M.U., Maqbool, R., Ziaulhaq, M., Lihong, W., Usman, S., Rasheed, A., Hassan, M.U., Hashem, M., Rehab, O., Elnour, R.O., Iqbal, M.M., & Arshad, M. (2023). The critical role of nitrogen in plants facing the salinity stress: Review and future prospective and future prospective and future prospective and future prospective. Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca journal, 51(3), 1-37. https://doi.org/10.15835/nbha51313347

Bagum, S.A., Billah, M., Hossain, N., Aktar, S., & Uddin, M.S. (2017). Detection of salt tolerant hybrid maize as germination indices and seedling growth performance. Bulg. J. Agric. Sci., 23(5), 793–798. https://www.agrojournal.org/23/05-16.pdf

Bano, S., Iqbal, S., Naqvi, B., Abbasi, K., Siddiqui, K., Sattar, H., & Aman, A. (2021). Antioxidant enzymes and germination pattern: upshot of high salinity on soluble protein and average weight of Spinacia oleracea (spinach) seedlings. Asian Food Science Journal, 20(3), 112-122. https://doi.org/10.9734/afsj/2021/v20i330283

Blaha, G., Stelzl, U., Spahn, C.M., Agrawal, R.K., Frank, J., & Nierhaus, K.H. (2000). Preparation of functional ribosomal complexes and effect of buffer conditions on tRNA positions observed by cryoelectron microscopy. Methods Enzymol., 317, 292–309. https://doi.org/10.1016/S0076-6879(00)17021-1

Can-Chulim, A., Cruz-Crespo, E., Ortega-Escobar, H.M., Sánchez-Bernal, E.I., Madueño-Molina, A., Bojórquez-Serrano, J.I., & Mancilla-Villa, O.R. (2017). Respuesta de Phaseolus vulgaris a la salinidad generada por NaCl, Na2SO4 y NaHCO3. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 8(6), 1287-1300. https://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S2007-09342017000601287

Cavusoglu, A. (2023). Salinity stress as an abiotic factor at germination stage on dry bean (Phaseolus vulgaris L.) cultivars. Current Trends in Natural Sciences, 12(23), 17-27. https://doi.org/10.47068/ctns.2023.v12i23.002

Ceritoğlu, M., Erman, M., & Yildiz, F. (2020). Effect of salinity on germination and some agro-morphological traits in chickpea seedlings. ISPEC Journal of Agricultural Sciences, 4, 82-96. https://doi.org/10.46291/ISPECJASvol4iss1pp82-96

Chaín, J.M., & Causin, H.F. (2018). Germinability and antioxidant metabolism in Passiflora caerulea L. seeds exposed to salt stress. Rev. Mus. Argentino Cienc. Nat., 20(1), 23-34. https://revista.macn.gob.ar/index.php/RevMus/article/view/563/479

Das, S.K., & Rafiqul-Islam, A.T.M. (2018). Effects of salinity on germination and seedling growth of lentil (Lens culinaris Medik) varieties in Bangladesh. Barishal University Journal Part 1, 5(1-2), 141-151. https://www.researchgate.net/publication/338254711_EFFECTS_OF_SALINITY_ON_GERMINATION_AND_SEEDLING_GROWTH_OF_LENTIL_LENS_CULINARIS_MEDIK_VARIETIES_IN_BANGLADESH

Dehnavi, A.R., Zahedi, M., Ludwiczak, A., Cardenas, S. & Piernik, A. (2020). Effect of salinity on seed germination and seedling development of sorghum (Sorghum bicolor (L.) Moench) genotypes. Agronomy, 10, 859. https://doi.org/10.3390/agronomy10060859

Djavanshir, K., & Pourbeik, H. (1976). Germination value-a new formula. Silvae Genetica, 25, 79-83. https://www.thuenen.de/media/institute/fg/PDF/Silvae_Genetica/1976/Vol._25_Heft_2/25_2_79.pdf

Ehtaiwwesh, A.F., & Emsahel, M. J. (2020). Impact of salinity stress on germination and growth of pea (Pisum sativum L.) plants. Al-Mukhtar Journal of Sciences, 35(2), 146-159. https://doi.org/10.54172/mjsc.v35i2.319

El-Badri, A.M., Batool, M., Mohamed, I., Wang, Z., Khatab, A., Sherif, A., Ahmad, H., Khan, M.N., Hassan, H.M., Elrewainy, I.M., Kuai, J., Zhou, G., & Wang, B. (2021). Antioxidative and metabolic contribution to salinity stress responses in two rapeseed cultivars during the early seedling stage. Antioxidants, 10(8), 1227. https://doi.org/10.3390/antiox10081227

El-Bastawisy, Z.M., El-Katony, T.M., & El-Fatah, S.N.A. (2018). Genotypic variability in salt tolerance of Vicia faba during germination and early seedling growth. Journal of King Saud University – Science, 30(2), 270–277. https://doi.org/10.1016/j.jksus.2017.04.004

Gu, M.F., Li, N., Long, X.H., Brestic, M., Shao, H.B., Li, J., & Mbarki, S. (2016). Accumulation capacity of ions in cabbage (Brassica oleracea L.) supplied with sea water. Plant Soil Environment, 62(7), 314–320. https://doi.org/10.17221/771/2015-PSE

Gupta, A., Rai, S., Bano, A., Khanam, A., Sharma, V., & Pathak, V. (2021). Comparative evaluation of different salt-tolerant plant growth-promoting bacterial isolates in mitigating the induced adverse effect of salinity in Pisum sativum. Biointerface Res. Appl. Chem., 11(5), 13141–13154. https://doi.org/10.33263/BRIAC115.1314113154

Harris, M., Krizaj, C., Ventura, F., & Frezza, D. (2023). Crecimiento e indicadores de tolerancia a la salinidad de verdolaga de invierno (Claytonia perfoliata Donn ex Willd.). Chilean J. Agric. Anim. Sci., ex Agro-Ciencia, 39(1), 45-64. https://doi.org/10.29393/CHJAA39-5CIMD40005

Hnilickova, H., Kraus, K., Vachova, P., & Hnilicka, F. (2021). Salinity stress affects photosynthesis, malondialdehyde formation, and proline content in Portulaca oleracea L. Plants, 10(845), 1-14. https://doi.org/10.3390/plants10050845

Ibrahim, M.H., Abas, N.A., & Zahra, S.M. (2019). Impact of salinity stress on germination of water spinach (Ipomoea aquatica). Annual Research & Review in Biology, 31(5), 1-12. https://doi.org/10.9734/ARRB/2019/v31i530060

International Seed Testing Association (ISTA). (2010). International rules for seed testing, Seed vigor testing. Chapter 15, 1–57.

Kaur, H., Bhardwaj, R.D., & Grewal, S.K. (2017). Mitigation of salinity-induced oxidative damage in wheat (Triticum aestivum L.) seedlings by exogenous application of phenolic acids. Acta Physiol. Plant., 39, 221. https://doi.org/10.1007/s11738-017-2521-7

Liu, Y., & von Wirén, N. (2022). Integration of nutrient and water availabilities via auxin into the root developmental program. Curr. Opin. Plant Biol. 65, 102117. https://doi.org/10.1016/j.pbi.2021.102117

Lowry, O.H., Rosebrough, N.J., Farr, A.L., & Randall, R. (1951). Protein measurement the Folinphenol reagent. J Biol Chem., 193(1), 265-275. https://doi.org/10.1016/S0021-9258(19)52451-6

Mbarki, S., Skalicky, M., Vachova, P., Hajihashemi, S., Jouini, L., Zivcak, M., Tlustos, P., Brestic, M., Hejnak, V., & Khelil, A.Z. (2020). Comparing salt tolerance at seedling and germination stages in local populations of Medicago ciliaris L. to Medicago intertexta L. and Medicago scutellata L. Plants, 9, 526. https://doi.org/10.3390/plants9040526

Mena, E., Leiva, M., Dilhara, E., García, L., Veitía, N., & Cárdenas, R. (2015). Efecto del estrés salino en la germinación y el crecimiento temprano de (Phaseolus vulgaris L). Cultivos Tropicales, 36(3), 71-74. https://doi.org/10.13140/RG.2.2.24818.09923

Miller, G. (1959). Use of dinitrosalicylic acid reagent for determination of reducing sugar. Anal. Chem., 31, 426-428. https://doi.org/10.1021/ac60147a030

Murillo, O. (1998). Variación en parámetros de germinación de una población natural de Alnus acuminata de Guatemala. Boletín Mejoramiento Genético y Semillas Forestales, 19, 4-8. https://repositorio.catie.ac.cr/bitstream/handle/11554/6916/A7182e.pdf?sequence=1

Navyashree, R., Ashvathama, V.H., Kiran, B.O., Rashmi, K., & Spoorthy, V.C. (2023). Effect of salinity stress on seed germination and seedling vigour index in chickpea genotypes. The Pharma Innovation Journal, 12(2), 2219-2223. https://www.thepharmajournal.com/archives/2023/vol12issue2/PartAA/12-2-188-788.pdf

Öner, F., & Kirli, A. (2018). Effects of salt stress on germination and seedling growth of different bread wheat (Triticum aestivum L.) cultivars. Akademik Ziraat Dergisi, 7(2), 191-196. https://doi.org/10.29278/azd.476365

Parida, A., Das, A.B., & Das, P. (2002). NaCl stress causes changes in photosynthetic pigments, proteins and other metabolic components in the leaves of a true mangrove, Bruguiera parviflora, in hydroponic cultures. Journal of Plant Biology, 45, 28-36. https://doi.org/10.1007/BF03030429

Polash, M.A.S., Sakil, M.A., & Hossain, M.A. (2019) Plants responses and their physiological and biochemical defense mechanisms against salinity: A review. Tropical Plant Research, 6 (2), 250–274. https://www.tropicalplantresearch.com/archives/2019/vol6issue2/35.pdf

Safdar, H., Amin, A., Shafiq, Y., Ali, A., Yasin, R.A., Shoukat, A., Hussan, M. U., & Sarwar, M. I. (2019). A. review: Impact of salinity on plant growth. Nat. Sci., 17, 34–40. https://doi.org/10.7537/marsnsj170119.06

Sagar, A., Tajkia, J.E., Haque, M.E., Fakir, M.S.A., & Hossain, A.K.M.Z. (2019). Screening of sorghum genotypes for salt-tolerance based on seed germination and seedling stage. Fundamental and Applied Agriculture, 4(1), 735–743. https://doi.org/10.5455/faa.18483

Sami, F., Yusuf, M., Faizan, M., Faraz, A., & Hayat, S. (2016). Role of sugars under abiotic stress. Plant Physiology and Biochemistry, 109, 54-61. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2016.09.005

Sen, T.T.H., Nhi, P.T.P., & Sen, T.T. (2017). Salinity effect at seedling and flowering stages of some rice lines and varieties (Oryza sativa L.). Journal of Agricultural Science and Technology A and B & Hue University Journal of Science, 7, 32-39. https://doi.org/10.17265/2161-6256/2017.10.005S

Shtaya, M.J.Y., Al-Fares, H., Qubbaj, T., Abu-Qaoud, H., & Shraim, F. (2021). Influence of salt stress on seed germination and agromorphological traits in chickpea (Cicer arietinum L.). Legume Research, 44(12), 1455-1459. https://doi.org/10.18805/LR-633

Singh, M., Singh, A.K., Nehal, N., & Sharma, N. (2018). Effect of proline on germination and seedling growth of rice (Oryza sativa L.) under salt stress. Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry, 7(1), 2449-2452. https://www.phytojournal.com/archives/2018/vol7issue1/PartAH/6-6-466-406.pdf

Sun, J., He, L., & Li, T. (2019). Response of seedling growth and physiology of Sorghum bicolor (L.) Moench to saline-alkali stress. PLoS ONE 14(7), e0220340. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0220340

Sun, L.J., Zhou, J.J., Pan, J.L., Liang, Y.Y., Fang, Z.J., Xie, Y., Yang, H., Gu, H.Y., & Bao, N. (2018). Electrochemical mapping of indole-3-acetic acid and salicylic acid in whole pea seedlings under normal conditions and salinity. Sensors and Actuators B: Chemical, 276, 545-551. https://doi.org/10.1016/j.snb.2018.08.152

Sun, Y., Liang, W., Cheng, H., Wang, H., Lv, D., Wang, W., Liang, M., & Miao, C. (2021). NADPH Oxidase-derived ROS promote mitochondrial alkalization under salt stress in Arabidopsis root cells. Plant Signalling and Behaviour, 16(3), Art. 1856546. https://doi.org/10.1080/15592324.2020.1856546

Taiz, L., & Zeiger, E. (2010). Plant Physiology. (4th Ed.). Sinauer, Sunderland, M. A.

Wang, D., Gao, Y., Sun, S., Lu, X., Li, Q., Li, L., Wang, K., & Liu, J. (2022). Effects of Salt Stress on the Antioxidant Activity and Malondialdehyde, Solution Protein, Proline, and Chlorophyll Contents of Three Malus Species. Life. 12(11), 1929. https://doi.org/10.3390/life12111929

Xiong, L., & Zhu, J.K. (2002). Molecular and genetic aspects of plant responses to osmotic stress. Plant, Cell and Environment, 25(2), 131–139. https://doi.org/10.1046/j.1365-3040.2002.00782.x

Yadav, M., Upadhyay, S. K., Singh, R., Kumar, S., Sharma, A.K., Bala, S., Rani, K., & Sehrawat, N. (2021). Effects of salinity stress on seedling growth of local varieties of faba bean (Vicia faba L.) from India. Plant Archives, 21(Supl. 1), 253 - 259. https://doi.org/10.51470/PLANTARCHIVES.2021.v21.S1.042

Yu, S., Yu, L., Hou, Y., Zhang, Y., Guo, W., & Xue, Y. (2019). Contrasting effects of NaCl and NaHCO3 stresses on seed germination, seedling growth, photosynthesis, and osmoregulators of the common bean (Phaseolus vulgaris L.). Agronomy, 9(8), 409. https://doi.org/10.3390/agronomy9080409

Zhao, S., Zhang, Q., Liu, M., Zhou, H., Ma, C., & Wang, P. (2021). Regulation of plant responses to salt stress. International Journal of Molecular Sciences, 22(9), 1-16. https://doi.org/10.3390/ijms22094609

Descargas

Publicado

16-12-2025

Número

Sección

Sostenibilidad de la producción agropecuaria

Cómo citar

Sosa del Castillo, M., Pintado Álvarez, I. M., Camacho Campos, C., Martínez Dávalos, Y., Sosa del Castillo, D., & Pérez Hernández, Y. (2025). Respuesta germinativa de Phaseolus vulgaris var. Velazco. en condiciones de estrés salino. Agrisost ISSN 1025-0247, 31, 1-10. https://doi.org/10.5281/zenodo.18404172

Artículos similares

También puede Iniciar una búsqueda de similitud avanzada para este artículo.